
ATCC 6538; NCTC 10788; NCIMB 9518; CIP 4/83.
ATCC 10231; NCPF 3179; IP 48.72/
ATCC 16404; IMI 149007; IP 1431.83.
При испытании применяют один из перечисленных тест-микроорганизмов и, при
необходимости, используют также другие микроорганизмы, которые могут представлять
вероятное микробное загрязнение лекарственного препарата. Например, при испытании
всех лекарственных препаратов для приема внутрь рекомендуется использовать
Escherichia coli (ATCC 8739; NCIMB 8545; CIP 53.126), а при испытании лекарственных
препаратов для приема внутрь, содержащих высокие концентрации сахара ‒
Zygosaccharomyces rouxii (NCYC 381; IP 2021.92).
Приготовление посевного материала
При подготовке к проведению испытания свежевыращенную основную культуру каждого
из указанных тест-микроорганизмов пересевают на поверхность соево-казеинового агара в
случае выращивания бактерий (2.6.12) или агара Сабуро с декстрозой без добавления
антибиотиков (2.6.12) в случае выращивания грибов. Культуры бактерий инкубируют при
температуре от 30 С до 35 С в течение от 18 ч до 24 ч, культуру C. Albicans ‒ при
температуре от 20 С до 25 С в течение 48 ч, а культуру A. brasiliensis ‒ при температуре
от 20 С до 25 С в течение одной недели или до получения хорошо развитых спор. Для
достижения микроорганизмов его оптимального состояния могут потребоваться пересевы,
однако рекомендуется ограничиться минимально возможным их числом.
Для приготовления суспензий бактериальных культур и культуры C. Albicans микробную
массу смывают с поверхности питательной среды стерильной суспендирующей
жидкостью, содержащей 9 г/л натрия хлорида Р, и переносят в подходящий сосуд. Затем с
помощью той же жидкости доводят содержание микроорганизмов до 10
8
в миллилитре.
Для приготовления суспензии A. brasiliensis используют стерильную суспендирующую
жидкость, содержащую 9 г/л натрия хлорида Р и 0.5 г/л полисорбата 80 Р, и с ее
помощью доводят содержание спор до 10
8
в миллилитре.
Из каждой суспензии тотчас отбирают подходящий образец и определяют число
колониеобразующих единиц в 1 мл каждой суспензии методом посева на чашки или
методом мембранной фильтрации (2.6.12). Полученное значение служит для определения
числа жизнеспособных микроорганизмов в инокуляте и исходного числа
микроорганизмов при проведении испытания. Инокулят следует использовать тотчас
после приготовления.
МЕТОДИКА
Для подсчета жизнеспособных микроорганизмов в инокулированных образцах
используют ту же питательную среду, которая была использована для первоначального
выращивания соответствующих микроорганизмов.
Каждый контейнер с испытуемым лекарственным препаратом инокулируют суспензией,
содержащей один из тест-микроорганизмов, до концентрации от 10
5
КОЕ/мл до
10
6
КОЕ/мл или КОЕ/г лекарственного препарата. Объем суспензии инокулята должен
составлять не более 1 % от объема образца. Тщательно перемешивают для обеспечения
равномерного распределения микроорганизмов в образце.